Programme

Programme 2012

Le programme 2014 n’est pas encore disponible. Néanmoins, nous donnons le programme 2012 sachant que le contenu de l’école est sensiblement mis à jour d’une session à l’autre, ceci afin de prendre en compte les évolutions scientifiques et technologiques de notre communauté.

Pré-modules : Cours d’initiation ou introductifs aux modules de l’école

PM1. Organisation de la cellule et méthode d’étude/ Bernard Vandenbunder et Sandrine Lecart

PM2. Introduction à l’optique pour la microscopie / Serge Monneret

PM3. La Photo-physique pour caractériser un environnement supramoléculaire peut-elle s’affranchir des chimistes de synthèse ? / Céline Frochot et Jean-Claude André

PM4. Introduction au traitement du signal / Alain Dieterlen

PM5. Limite de résolution et transformée de Fourier optique : approche intuitive / Yves Tourneur

 

Modules d’enseignement

1 – Microscopie de fluorescence en biologie

M1-1. Les concepts majeurs de la microscopie de fluorescence ; contraste, mesure de dynamique moléculaire, ultra-résolution , par Serge Monneret, Marseille

M1-2. Sondes fluorescentes : des molécules organiques aux nanoparticules multifonctionnelles, par Olivier Tillement, Lyon

M1-3. Analyse d’image quantitative en microscopie de fluorescence, par Alexandre Dufour, Paris

M1-4. Intérêt et limites de la quantification en fluorescence, par Catherine Souchier, Grenoble

 

2 – Super-résolution en microscopie

M2-1. Imaging cellular structures with near-molecular resolution using photoswitchable fluorophores, par Mike Heilemann, Würzburg

M2-2. Structure Illumination Microscopy, par Rainer Heintzmann, Jena

M2-3. From the principle to the state-of-the-art of STED nanoscopy, par Gael Moneron, Paris

M2-4. Image analysis for single molecule based super-resolution microscopy, par Jean-Baptiste Sibarita, Bordeaux

 

3 – Optique non linéaire

M3-1a. Sources laser à impulsions ultra-brèves pour la microscopie, par Sandrine Lévêque-Fort, Paris

M3-1b. La microscopie non linéaire pour la biologie : intérêt et limitations, contrastes, polarimétrie, par Emmanuel Beaurepaire, Palaiseau

M3-2. Microscopie Raman stimulée CARS / SRS : mise en œuvre et applications, par Hervé Rigneault, Marseille

M3-3. Super continum et laser, par Frédéric Druon, Palaiseau

M3-4.Contrôle du front d’onde et Optique adaptative, par Vincent Loriette, Paris

 

4 – Assemblages moléculaires in vivo : dynamiques et interactions

M4-1. Mesure de la dynamique des interactions moléculaires par FRET : Techniques et analyses, par Aymeric Leray, Lille

M4-2. Quelques aspects de la modélisation physique des interactions et de la dynamique des protéines membranaires, par Nicolas Destinville, Toulouse

M4-3. Deciphering the cell membrane organization by fluorescence correlation spectroscopy at different length scales, par Didier Marguet, Marseille

M4-4. Assembly of functional post-synapses by neurexin-neuroligin adhesions: single molecule studies, parOlivier Thoumine, Bordeaux

 

5 – Photomanipulation et biosenseurs

M5-1.Zooming in on signal transduction by FRET, par Kees Jalink, Amsterdam

M5-2.Constructing biosensors based on energy transfer between fluorescent proteins, par Juan Llopis, Albacete

M5-3. Spatio temporal control of neuronal activity by wave front shaping, par Valentina Emiliani, Paris

M5-4.Dissecting intracellular biochemical circuits with optogenetic toolkits, par Mathieu Coppey, Paris

 

6 – Biophotonique dans les tissus et organismes vivants

M6-1.Imagerie multimodale pour une reconstruction multiéchelle du développement d’organismes modèles, par Nadine Peyriéras, Paris

M6-2.La microscopie à feuille de lumière ( Light Sheet Microscopy), par Corinne Lorenzo, Toulouse

M6-3.Microscopie Biphotonique pour l’Imagerie Intravitale, par Boudewjin Van Der Sanden, Grenoble

M6-4.Spectral and Quantitative Intravital Imaging of CNS pathologies: from visible to X photons, par Frank Debarbieux, Marseille

 

7 – Microscopie corrélative

M7-1.Precisely correlated fluorescence and 3D electron microscopy to study ultrastructural intermediates during dynamic and rare cellular events, par Wanda Kukulski, Heidelberg

M7-2. Focus Ion Beam and Microtome for serial block face scanning electron microscopy: tools to explore the three dimensional ultrastructure, par Christel Genoud, Bale

M7-3. CLEM on mammalian cells: identification of highly dynamic subcellular structures, par Graca Raposo, Paris

 

Emploi du temps :

Le programme de la session 2012 comprend des cours magistraux en grande majorité le matin, ateliers, tables rondes en après-midi et/ou soirée, conférences et séminaires en fin de demi-journées :